Насытить воду кислородом перекись

Очистка искусственных водоемов

Очистка искусственных водоемов

Чистота воды в вашем водоеме зависит от вас.

Водоем это живое существо, жизненный цикл которого полностью зависит от физических и химических законов природы. Огромные пресные озера появились на Земле миллионы лет назад, и просуществуют еще очень долго, но чем меньше водоем тем короче его жизнь, тем скорее химические процессы, происходящие в нем могут превратить его в зловонную лужу. Но если привести в гармонию воду, флору и фауну с окружающей средой то жизнь маленького прудика будет чистой, долгой и беспроблемной.
Так какие факторы определяют состояние воды в водоеме?

Главная проблема маленьких пресных водоемов это органические осадки. Процесс отмирания водорослей, гниение органики поступившей в водоем из вне, через паводковые и дождевые стоки(листва, растения, насекомые), увеличивает слой донного ила и со временем превращает пруд в густое болото. Химические процессы активируют образование аммонийного азота, метана, сероводорода, окиси углерода. Со временем проявляются токсичные продукты распада белка — скатол, индол. В придонных слоях воды образуется гиасмин, изменяющий цвет и запах воды. Содержание кислорода в воде падает, увеличивая риск возникновения заморов. А в зимнее время в водоеме отсутствует поверхностная аэрация, и возникновение заморов неизбежно.

Что же делать и как избежать этого?

1. Пруд должен быть спускным или проточным. Циркуляция свежей воды и возможность очистки дна от иловых отложений позволит улучшить гидрохимический режим водоема.
2. Аэрация воды в водоеме – установка потокообразователей. Аэраторы насыщают воду кислородом, устраняют заморные зоны, образуют течение в пруду, активизируя процессы самоочистки.
3. Использование для очистки воды перекиси водорода.

В природе перекись водорода образуется при окислении как побочный продукт. Перекись водорода всегда присутствует в атмосферных осадках и является экологически чистым продуктом.

Перекись водорода неустойчивое соединение, ультрафиолет, высокая температура, катализаторы разложения способствуют распаду вещества на воду и кислород. Перекись водорода — это сильнейший окислитель, и главные ее преимущества основаны на её окисляющей способности, или на способность распадаться на молекулу воды и атом кислорода.

Перекись водорода для очистки воды в искусственных водоёмах.

Перекись водорода для водоёмов с пресной водой используется как один из эффективных способов дезинфекции воды и борьбы с водорослями. Может применяться и в случаях значительно заросших водоёмов, когда необходимо быстро и оперативно убрать расплодившуюся органику.
Использование перекиси водорода значительно увеличивает окислительно — восстановительный потенциал водоема, затормаживается процесс образования и развития водорослей. Прекращается химическое преобразование неядовитых нитратов (NO3) в ядовитый газ (NO2). Выделяющийся атомарный кислород окисляет растворенную в воде органику преобразовывая ее в углекислый газ (СО2). Большое содержание углекислого газа в воде снижает рН водоема, угнетает образование водорослей и стимулирует развитие высшей водной растительности: водяной сосенки, рдестами, водяной гречихи, роголистника, урутьи, элодеи, пузырчатки и др.
Угнетение развития водорослей — это не только вопрос красоты и эстетики, это в первую очередь необходимость поддержания здоровья живущей в водоеме рыбы.

При применении перекиси водорода кислорода мелкий мусор поднимается к поверхности и собирается в небольшие кучки, вредная биология отмирает и всплывает наверх. Спустя несколько дней вода становится чистой и прозрачной.

Применение:

Перед залитием разбавьте концентрат перекиси водорода, 37% или 60% водой до 0,5-1%. Заливайте перекись водорода в водоем при помощью лейки.
Рекомендуемая доза для водоема с рыбой:
15-20 мл 60% пергидроль на 1 м3
25-30 мл 37% пергидроль на 1 м3
Рекомендуемая доза для водоема без рыбы:
25-30 мл 60% пергидроль на 1 м3
45-50 мл 37% пергидроль на 1 м3

Но будьте внимательны, завышение дозировки перекиси водорода может принести вред рыбе живущей в водоеме.
Концентрация 25 мг/литр может привести к гибели плотвы, белорыбицы и других видов.

Добавить комментарий Отменить ответ

Для отправки комментария вам необходимо авторизоваться.

Источник

ПРИМЕНЕНИЕ ПЕРИКИСИ ВОДОРОДА ДЛЯ НАСЫЩЕНИЯ ВЕНОЗНОЙ КРОВИ КИСЛОРОДОМ

В условиях гипоксии, вызванной геморрагическим шоком, предложено переливать пострадавшим донорскую кровь, насыщенную кислородом. Показано, что получить насыщенную кислородом донорскую венозную кровь можно с помощью инъекций в нее водного изотонического щелочного буферного раствора, состоящего из 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,05 – 0,29% перекиси водорода. Изменение темно-вишневого цвета венозной крови на ярко красный цвет, аналогичный цвету артериальной крови, является критерием эффективности и адекватности средства.

Ключевые слова: консервированная кровь, геморрагический шок, гипоксия, кислород, перекись водорода. Введение.

Истинной причиной смерти большинства людей, наступающей независимо от первопричины угнетения кровообращения, является гипоксическое повреждение клеток головного мозга [11]. Бытует мнение, что препараты, относящиеся к группе антигипоксантов, способны повышать устойчивость к гипоксии и защищать клетки коры головного мозга от гипоксического повреждения. Однако это ложь, поскольку ни один современный антигипоксант не способен заменить собой кислород [1, 2]. Несомненно, что лучшими антигипоксантами являются кислород и . холод [3, 4, 10]. Однако, современные технологии оживления с помощью кислорода не всегда эффективны при гипоксии [5, 6, 7, 8, 9]. Дело в том, что вводимый в дыхательные пути пациента газ кислород не всегда транспортируется в головной мозг. Также невозможно его прямое введение в венозную кровь или головной мозг из-за немедленного развития газовой эмболии [5].

В последнее время показано, что раствор перекиси водорода, произведенный в лекарственной форме

«Раствор для инъекций», способен заменить газ кислорода, поскольку способен превращать венозную кровь в артериальную кровь без участия легких [5]. Способность перекиси водорода заменять кислород была доказана ранее в опытах с аквариумными рыбками породы «гуппи» и «неоны» [2], а также в клинических исследованиях с кровоподтеками [12].

Цель исследования – исследование возможности обогащения стандартной донорской крови кислородом без применения газа кислорода и традиционного оксигенирования крови.

Материалы и методы исследования. Исследования проведены в лабораторных условиях при температуре +25°С. Эксперименты были проведены in vitro c порциями стандартной донорской венозной крови человека, в которые путем инъекций вводились растворы исследуемых средств в соотношении 8:1. [3]. Динамика насыщения крови кислородом и внутритканевое кипение, возникающее за счет образования пузырьков газа кислорода, исследовалась по изменению лучевых свойств крови на глаз в видимом диапазоне спектра излучения и в ультразвуковом диапазоне спектра излучения с помощью ультразвукового прибора экспертного класса ALOKA SSD – ALPHA 10.

Осмотическая активность растворов была определена с помощью осмометра марки VAPRO 5600 (USA). В качестве контроля был использован изотонический раствор 0,9% натрия хлорида.

Параллельно проводилась биологическая оценка антигипоксического действия изобретенного средства на 100 живых аквариумных рыбках породы гуппи и голубые неоны. Рыбок помещали в герметичные шприцы объемом по 5 мл, внутрь которых вводили исследуемый раствор. Динамика двигательной активности рыб снималась на камеру вплоть до их полного обездвиживания и смерти [3].

Статистическая обработка результатов проведена с помощью программы BIOSTAT по общепринятой методике.

С целью выявления «нужных» доз перекиси водорода и гидрокарбоната натрия нами в модельных условиях были проведены многочисленные скрининговые исследования с донорской кровью и с водными растворами, содержащими натрия хлорид в концентрациях менее 0,9%, гидрокарбонат натрия в концентрациях менее 1,7% и перекись водорода в концентрациях менее 0,3%. Моделями служили прозрачные полиэтиленовые пакеты объемом по 100 мл с двумя нижними отверстиями каждый. В каждый из пакетов первоначально вводилось по 40 мл стандартной консервированной венозной донорской крови. Затем с помощью штативов, установленных на лабораторном столе, пакеты подвешивались вертикально в положении отверстиями вниз и с вставленными в них инъекционными иглами, одна из которых была соединена с устройством для переливания крови, другая – со шприцем, заполненным одним из выбранных растворов при комнатной температуре. Затем в каждую емкость, содержащую по 40 мл крови, вводилось с помощью шприца по 5 мл определенного раствора. Всего нами было поставлено 140 опытов.

Полученные результаты показали правильность сделанного предположения: перекись водорода позволяет в считанные секунды насыщать кислородом консервированную венозную кровь без газа кислорода и без образования кровавой пены. Сегодня мы можем заявить, что нам удалось изобрести новое лекарственное средство, превращающее венозную кровь в артериальную.

Первоначально были проведены опыты с высокими концентрациями ингредиентов. При этом была установлена принципиальная возможность трансформировать с помощью перекиси водорода венозную кровь темно-вишневого цвета в кровь, насыщенную кислородом и имеющую ярко алый цвет. Однако оказалось, что высокая концентрация перекиси водорода вспенивает кровь и увеличивает ее объем почти в 2 раза, что не позволяет вводить такую кровь в вену пострадавших из-за угрозы газовой эмболии сосудов. При этом кровавая пена и пузыри сохраняются при комнатной температуре 16,3 ± 0,1 минут (Р ≤ 0,05, n = 5), после чего порция крови сохраняет алый цвет и напоминает собой артериальную кровь на протяжении всего периода наблюдения.

Затем наши исследования были направлены на выяснение диапазона концентрации ингредиентов и общие их дозы, обеспечивающие, с одной стороны, высокую эффективность и скорость насыщения венозной крови кислородом, а с другой стороны – высокую безопасность обработанной донорской крови за счет отсутствия в ней пузырьков газа.

Результаты проведенных исследований показали, что введение в пакеты с донорской кровью растворов, содержащих 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,29 – 0,05% перекись водорода, вызывало умеренное образования газа в среднем через 4,5 ± 0,15 — 9,7 ± 0,4 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5). При этом темно- вишневый цвет крови менялся на алый цвет через 14,3 ± 0,7 — 61 ± 2,2 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5). Пузырьки газа имели мелкие размеры, медленно перемещались кверху, размещались в верхнем слое крови и через несколько секунд лопались практически без образования кровавой пены. Установлено, что кровь внутри пакета сохраняла алый цвет на протяжении всего последующего периода наблюдения. Кроме этого, установлено, что уже через 3 минуты после начала взаимодействия введенного средства с донорской кровью реакция сатурации крови кислородом практически завершалась и из пакета выливалась жидкая кровь алого цвета без пузырьков газа.

В свою очередь, результаты опытов показали, что раствор 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната, содержащий перекись водорода в концентрации 0,04% и менее, не годится для насыщения венозной крови кислородом, поскольку после введения его в порцию донорской крови этот раствор медленно всплывает вверх без образования пузырьков газа в крови. А после этого бесцветный прозрачный раствор размещается над кровью. При этом цвет основной массы крови остается темно-вишневым, но через 15 минут верхний слой крови толщиной около 1,5 см приобретает алый цвет. В последующие 60 минут наблюдения состояние взаимодействующих масс изменяется незначительно.

Следовательно, раствор 0,85% натрия хлорида, 0,1% натрия гидрокарбоната и 0,05 – 0,29% перекиси водорода может вводиться в плазму венозной крови с целью насыщения ее эритроцитов кислородом и превращения венозной крови в артериальную кровь без введения в нее газа кислорода. Разработанное нами лекарственное средство защищено патентом РФ на изобретение № 2538662 [4].

1. Изобретено жидкое лекарственное средство, способное без оксигенирования ее газом кислородом и вентилирования легких пациента дыхательным газом насыщать кислородом консервированную венозную кровь.

2. Новое средство представляет собой изотонический субщелочной водный раствор перекиси водорода. Средство предназначено для инъекционного введения в донорскую кровь, хранящуюся внутри емкости, вплоть до придания ей ярко красного цвета.

Выражаю благодарность научному руководителю, профессору РАЕ Александру Ливиевичу Уракову за помощь в написании статьи и за помощь в проведении научных исследований.

1. Ураков А.Л., Уракова Н.А., Чернова Л.В. Cпособ скрининга антигипоксантов// Успехи современного естествознания. — 2014. № 9 (1). С. 24 – 27.

2. Ураков А.Л., Уракова Н.А., Чернова Л.В. Раствор перекиси водорода может стать конкурентом газа кислорода во время реанимации// Успехи современного естествознания. — 2014. № 12. С.198–203.

3. Ураков А.Л. Холод в защиту сердца. Наука в СССР. 1987. № 2. С. 63.

4. Ураков А.Л., Уракова Н.А., Решетников А.П., Сойхер М.Г., Сойхер Е.М., Копылов М.В., Чернова Л.В. Гипероксигенированное средство Е.М. Сойхер для насыщения венозной крови кислородом. Патент на изобретение (RUS № 2538662).

5. Чернова Л.В. Новые технологии применения «старых» лекарств для насыщения венозной крови кислородом // Здоровье и образование в XXI веке. 2015. Т. 17. №3. С. 39-44.

6. Urakov A., Urakova N., Kasatkin A., Chernova L. Physical-chemical аggressiveness of solutions of medicines as a factor in the rheology of the blood inside veins and catheters // Journal of Chemistry and Chemical Engineering. — 2014.Vol. 8. N.01. P. 61 – 65.

8. Urakov A.L., Urakova N.A., Chernova L.V., Fischer E.L., Nasyrov M.R. Infrared thermography forearm skin in places intradermal injections of blood or solutions of drugs before and after the appearance of the bruise // Thermology International. — 2015. Vol. 25. No 2. P. 66-67.

9. Urakov A.L. The change of physical-chemical factors of the local interaction with the human body as the basis for the creation of materials with new properties // Epitőanyag – Journal of Silicate Based and Composite Materials. — 2015. Vol. 67. No. 1. P. 2–6.

10. Urakov A., Nasyrov M., Chernova L. How fingers became warm after cooling // Thermology International. 2015.Vol. 25. No 3. P. 123.

Источник

Насытить воду кислородом перекись

Гипоксическое повреждение клеток коры головного мозга, возникающее вследствие исчезновения кислорода в нем, является непосредственной причиной биологической смерти большинства людей и животных на Земле [9-3, 23, 28]. Поэтому именно кислород является настоящим антигипоксантоми самым универсальным антисмертельным средством [10, 16, 24].Тем не менее, современные медицинские технологии применения кислородав роли оживляющего средства приклинической смертиимеют низкую эффективность [8, 11, 19, 20]. На наш взгляд, причиной низкой клинической эффективности кислорода является то, что онвводитсяв виде газа и вводится не в головной мозг и даже не в кровь, а в дыхательные пути пациентов [10, 19, 21].

Дело в том, что введениекислорода в организм в виде дыхательного газане всегдаобеспечивает всасывание его в кровь при клинической смерти и дальнейшую доставку кислорода с кровьюк головному мозгу, посколькуклиническая смерть является следствием остановки кровообращения [2, 3]. Поэтому кровь не транспортируется по кровеноснымсосудам легких, головного мозга и других органов, а кислород, вводимый в дыхательные пути пациента при искусственной вентиляции легких, хоть и быстро насыщает собой кровь, стоящую неподвижно в сосудах легких, но после ее насыщения перестает всасываться и начинает полностью выводиться наружуво время последующих выдохов.При этом газообразное состояние медицинского кислорода являетсяпрепятствием его инъекций в ткань головного мозга из-за 100%-й вероятности развития газовой эмболии.

В то же время, очевидно, что защитить клетки коры головного мозга от гипоксического поврежденияможно только с помощью повышения концентрации кислорода внутри клеток либо с помощью уменьшения их температуры (охлаждения вплоть до 0°С) [2, 3, 9, 10, 11, 12, 14, 15]. Из этого следует, что для предотвращения клинической смерти кислород следует вводить не в легкие, и даже не в кровь, а непосредственно в ткань головного мозга!

Не смотря на это, врачи реаниматологи до сих пор не вводят кислород в голову пациентов при их клинической смерти, и пациенты умирают от недостатка кислорода в головном мозге в условиях избытка кислорода вокруг их головы !Очевидно, что данный парадокс может быть устранен превращением газообразного кислорода в водный раствор. В частности, таким раствором может быть вода, поскольку в ней может содержаться растворенный кислород [1, 7, 17]. Кроме этого, кислород может бытьвведен в воду в виде химического аккумулятора кислорода, в частности, в виде перексида водорода [14].

Тем не менее, перспективность замены газообразного кислорода в воде и в тканях человека и животных на органическую кислоту перекиси водорода с целью продления жизни людей и животных изучена недостаточно.

Целью исследования являетсядемонстрация фармакологической активности раствора перекиси водорода.

Материалы и методы исследования

Опыты по изучению возможностинасыщения кислородом эритроцитов венозной крови человека с помощью раствора перекиси водорода проведены в лабораторных условиях при температуре +25°Сс 35 порциями стандартной донорской венозной крови. Для этого каждаяпорция крови объемом по40 млпомещаласьв прозрачные полиэтиленовые пакетыобъемом по 100 мл. Каждый полиэтиленовый пакет имел два нижних отверстия.С помощью штативов, установленных на лабораторном столе, пакеты с кровью были подвешены вертикально в положении отверстиями вниз и с вставленными в них инъекционными иглами, одна из которых была соединена с устройством для переливания крови, другая – со шприцем, заполненным одним из выбранных растворов при комнатной температуре. Затем в каждую емкость из шприца вводились исследуемыерастворы в объеме по 5 мл каждый, после чего наблюдали на глаз и с помощью УЗИ за состоянием крови на протяжении 60 минут.

Ультразвуковое исследование консервированной крови, находящейся внутри пластикового пакета,проведено с использованием прибораэкспертного класса ALOKA SSD – ALPHA 10. В качестве датчика был использован стандартный датчик конвексного типа с частотой 3 – 7 МГц [4, 13]. Ультразвуковые исследования проведены по стандартной методике[13,17].

В опытах было исследовано влияние следующих растворов:

1. Раствор 0,3% перекись водорода и 1,7% натрия гидрокарбоната;

2. Раствор 0,3% перекиси водорода, 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната;

3. Раствор 0,29% перекиси водорода, 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната;

4. Раствор 0,10% перекиси водорода, 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната;

5. Раствор 0,06% перекиси водорода, 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната;

6. Раствор 0,05% перекиси водорода, 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната;

7. Раствор 0,04% перекиси водорода, 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната.

Осмотическая активность растворов была определена с помощью осмометра марки VAPRO 5600 (USA. В качестве контроля был использован изотонический раствор 0,9% натрия хлорида [5, 6, 22].

Опыты по изучению динамики состояния рыб при острой смертельной гипоксиипроведены на 100 живых аквариумных рыбках породы гуппи и голубые неоны обоего пола массой по 280-330 мг. Моделирование острой гипоксии у рыбок достигалось путем помещения каждой рыбки в пресную воду при температуре +15 либо +25°С, находящуюся внутри отдельной пластиковой прозрачной герметичной емкости объемом 5 мл (в этой роли были использованы пластиковые инъекционные шприцы). Проведено 2 серии опытов. В контрольной серии опытов регистрировалась динамика двигательной активности рыб, цвета их плавников идлительность нахождения их живыми в обычной пресной воде внутри герметичной емкости после дополнительного введения 10 мкл дистиллированной воды. В опытной серии проводились аналогичные исследования, но в воду к рыбам вводилось10 мкл дистиллированной воды, содержащей различные концентрации перекиси водорода. При этом проводилась киносъемка двигательной активности рыб вплоть до их полного обездвиживания и смерти [13, 14, 16, 17].

Статистическая обработка результатов проведена с помощью программы BIOSTAT по общепринятой методике.

Результаты исследования
и их обсуждение

Предварительно нами был проведен анализ состава известных растворов, содержащих перекись водорода. Оказалось, что все они представляют собой санитарно-гигиенические средства, предназначенные исключительно для наружного примененияс целью санации гнойных ран.Было выяснено, что все известные антисептические, дезинфицирующие и санирующие растворысодержат перекись водорода в концентрациях, превышающих 0,3%. Помимо перекиси водорода в состав многих известных растворов входит гидрокарбонат натрия, который включается для умеренного защелачивания, оптимизации щелочного гидролиза и разжижения густых гнойных масс. С этой целью растворы включают гидрокарбонат натрия в концентрации 1,7 – 10% [22].

Предполагалось, что известные растворы перекиси водорода и натрия гидрокарбоната при взаимодействии с кровью вызовут бурное образование газа кислорода и кровавой пены.Для проверки данного предположения была проведена серия опытов по взаимодействию с кровью раствора 0,3% перекиси водорода и 1,7% натрия гидрокарбоната. Опыты были проведены с этим раствором потому, чтоэтот раствор имеет самые низкие концентрации ингредиентов и поэтому именно он должен обладать самой низкой агрессивностью в отношении крови.

Однако полученные нами результаты показали, что кровь при взаимодействии с этим растворомбурно вспенивалась, хотя и немедленно изменяла свой цвет с темно-вишневого на алый. Причем, кровавая пена алого цвета тут же увеличивала внутренний объем содержимого пакета практически в 2 раза и пузырилась. Кровавая пена и пузыри сохранялись 16,3 ± 0,1 минут (Р ≤ 0,05, n = 5), после чего порция крови приобретала вид жидкости, лишенной пузырьков газа, и сохраняла алый цвет на протяжении всего периода наблюдения.

Эти результаты убедили нас в том, что бурное образование кровавой пены происходит из-за активного внутритканевого образования пузырьков газа кислорода под влияниемкаталазной реакции в условиях значительной щелочности, поскольку перекись водорода и натрия гидрокарбонат находятся в повышенных концентрациях. Дополнительное образование внутри пакета с кровью равного объема кровавой пены, которая безудержно перемещается во всех возможных направлениях, исключает безопасное применение раствора 0,3% перекиси водорода и 1,7% натрия гидрокарбоната для инъекционной сатурации кислородом консервированной венозной крови.

В связи с этим было решено, с одной стороны, уменьшить концентрацию перекиси водорода и натрия гидрокарбоната в растворе, а с другой стороныповысить безопасность средства за счет придания раствору величины осмотической активности в пределах 280 мОсмоль/л воды.Для этогобыло решено взять за основу изотонический раствор 0,9% натрия хлорида, который затем модифицировали и придали ему физиологическую щелочность и буферность с помощью натрия гидрокарбоната в концентрации 0,1%. В связи с тем, что раствор 0,1% натрия гидрокарбоната обладает самостоятельной осмотической активностью в пределах 35 мОсмоль/л воды, было решено уменьшить концентрацию натрия хлорида в растворе.Теоретические расчеты показали, что для сохранения осмотической, щелочной и буферной активности в пределах физиологического уровня раствор должен содержать0,85% натрия хлорида и 0,1% натрия гидрокарбоната. Затем было проведено определение осмотической активности указанного раствора прямым методом. Полученные нами результаты подтвердили это предположение.

После этого оставалось определить то, в какой концентрации должна находиться в этом растворе перекись водорода. С этой целью нами были проведены лабораторные исследования с донорской кровью и модифицированными изотоническим раствором 0,85% натрия хлорида и 0,10% натрия гидрокарбоната, в который дополнительновводилась перекись водорода в концентрации0,3%, 0,29%, 0,10% 0,06%, 0,05% или 0,04%.

Первая серия опытов была проведена с раствором 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,30% перекиси водорода. Показано, что сразу же после введения в кровь этого раствора в крови началось внутритканевое газообразование и бурное формирование кровавой алой пены. При этом содержимое пакета разделилось на две фракции: на жидкую кровь, оставшуюся внизу, и кровавую пену, оказавшуюся вверху. В результате пакет разбух из-за того, что объем содержимого увеличился за счет газа и пены. Процесс образования пузырьков газа в крови и пены прекратился через 10,4 ± 0,5 минут (Р ≤ 0,05, n = 5) после введения. Затем еще через 3,3 ± 0,05 минут (Р ≤ 0,05, n = 5) почти вся кровавая пена разрушилась, кровь заняла собой нижнюю часть пакета и на протяжении 60 минут наблюдения оставалась алого цвета.

Вторая серия опытов была проведена с раствором 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,29% перекиси водорода. Показано, что через 4,5 ± 0,15 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) после его введения в пакет с кровьюв нейначиналось умеренное внутритканевое газообразование, под влиянием которого через 14,3 ± 0,7 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) темно-вишневый цвет крови менялся на алый цвет. Ультразвуковое исследование крови, которое было проведено сквозь стенку пакета, показало, что в ней происходило образование пузырьков газа и уменьшение ультразвуковой эхогенности крови. Пузырьки газа имели мелкие размеры, постепенно перемещались кверху, размещались в верхнем слое крови и через несколько секунд лопались без образования существенной массы пены. Через 3 минуты после инъекции раствора в кровь было произведено выливание крови из пакета через вторую инъекционную иглу с помощью устройства для переливания крови. В результате выливания крови на чашку Петри обнаружено, что при этом удалось вылить из пакета практически всю кровь, которая сохраняла алый цвет. Причем, кровь вытекала из устройства наружу без пузырьков газа.Кровь внутри пакета сохраняла алый цвет на протяжении всего последующего периода наблюдения.

Третья серия опытов была проведена с раствором 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,10% перекиси водорода. Показано, что через 5,0 ± 0,20 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) после его введения в пакет с кровью в ней начиналось умеренное внутритканевое образование мелких пузырьков газа. Через 47,5 ± 1,5 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) темно-вишневый цвет крови менялся на алый цвет. Ультразвуковое исследование крови, которое было проведено сквозь стенку пакета, показало, что в ней происходило образование пузырьков газа и уменьшение ультразвуковой эхогенности крови. Пузырьки газа имели мелкие размеры, постепенно перемещались кверху, размещались в верхнем слое крови и через несколько секунд лопались без образования пены. Через 3 минуты после инъекции раствора в кровь было произведено выливание крови из пакета через вторую инъекционную иглу с помощью устройства для переливания крови. В результате выливания крови на чашку Петри обнаружено, что при этом удалось вылить из пакета практически всю кровь, которая сохраняла алый цвет. Причем, кровь вытекала из устройства наружу без пузырьков газа. Кровь внутри пакета сохраняла алый цвет на протяжении всего последующего периода наблюдения.

Четвертая серия опытов была проведена с раствором 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,06% перекиси водорода. Показано, что через 8,8 ± 0,3 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) после введения этого раствора в кровь в ней начиналось слабое внутритканевое образование очень мелких и редких пузырьков газа, под влиянием которого через 56 ± 2,0 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) кровь изменяла свой цвет с темно-вишневого на алый. Ультразвуковое исследование крови, которое было проведено сквозь стенку пакета, показало, что в ней происходило слабое образование пузырьков газа и незначительное уменьшение ультразвуковой эхогенности крови. При этом пена не образовывалась. В крови появлялись лишь единичные и мелкие пузырьки газа, которые очень медленно всплывали вверх и через несколько секунд лопались над кровью. Показано, что кровь сохраняла алый цвет на протяжении всего последующего периода наблюдения.

Пятая серия опытов была проведена с раствором 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,05% перекиси водорода.Показано, что через 9,7 ± 0,4 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) после введения этого раствора в кровь в ней начиналось слабое и очень плохо видимое внутритканевое образование очень мелких пузырьков газа, под влиянием которого через 61 ± 2,2 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) кровь изменяла свой цвет с темно-вишневого на алый. Ультразвуковое исследование крови, которое было проведено сквозь стенку пакета, показало, что в ней происходило слабое образование пузырьков газа и незначительное уменьшение ультразвуковой эхогенности крови. При этом пена не образовывалась. В крови появлялись лишь единичные и мелкие пузырьки газа, которые очень медленно всплывали вверх и через несколько секунд лопались над кровью. Показано, что кровь сохраняла алый цвет на протяжении всего последующего периода наблюдения.

Шестая серия опытов была проведена с раствором 0,85% натрия хлорида, 0,10% натрия гидрокарбоната и 0,04% перекиси водорода.Показано, чтопосле введения в кровь этотраствор медленно всплывалвверх без образования пузырьков газа в крови.Затем раствор размещался надкровью. При этом цвет основной массы крови оставался темно-вишневым,но через 15 минутверхний слой крови толщиной около 1,5 см приобрел алый цвет. В последующие 60 минут наблюдения состояние взаимодействующих масс изменилось незначительно.

Следовательно, раствор 0,85% натрия хлорида, 0,1% натрия гидрокарбоната и0,05 – 0,29% перекиси водородаможетвволдиться в плазму венозной крови с целью насыщения ее эритроцитов кислородом и превращения венозной крови в артериальную кровь без введения в нее газа кислорода. Данное средство получило название «Гипероксигенированное средство М.Г.Сойхер для насыщения венозной крови кислородом» [18].

Параллельно с этим была изучена биологическая активность раствора перекиси водорода в опытах с аквариумными рыбками при их острой потенциально смертельной гипоксии. Полученные нами результаты показали, что в норме в начале гипоксии рыбкипринимают неподвижное состояние, которое при температуре воды +15 и +25°Сдлится у рыбок породы гуппи соответственно 56,5 ± 2,1и 24,3 ± 1,4 минут (Р ≤ 0,05, n = 25). После этого у рыбок появляются судорожные движения туловищем, жаберными дугами, плавниками, хвостом, широко открывается рот, и рыбки начинают интенсивно пропускать воду через рот и жабры. При температуре воды +15 и +25°С высокая двигательная активность рыб породы гуппи длится соответственно 98,5 ± 1,1 и 44,5 ± 0,6 секунд(Р ≤ 0,05, n = 25). После этого рыбки становятся неподвижными, опускаются на дно емкости, переворачиваются животом вверх, а затем всплывают вверх. В состоянии вверх животом и с редкими дыхательными движениями рта и жаберных дуг рыбы находятся еще около 1 минуты и только затем погибают.

Иная динамика поведения рыбок наблюдается после введенияв воду с рыбками раствора перекиси водорода. Показано, что продолжительность жизни рыб в условиях потенциально смертельной гипоксии зависит от дозы введенной перекиси водорода. Причем, при введении перекиси водорода в дозе, создающей физиологическую концентрацию перекиси водорода в воде с рыбками,она способна оживлять рыбок в условиях гипоксиии сохранять рыбок живыми без растворенного в воде кислорода в 2 – 2,5 раза дольше, чем в норме (в зависимости от температуры воды). При введении перекиси водорода в дозе, создающей токсическую концентрацию перекиси водорода в воде с рыбками, она способна убить рыбок в норме и ускорить в 2 раза наступление смерти рыбок в условиях отсутствия в воде растворенного кислорода.

Следовательно, раствор перекиси водорода вполне пригоден для инъекций в воду с рыбками с целью обеспечения их кислородом без растворения в воде газа кислорода.

Таким образом, предложен раствор перекиси водорода для инъекций, который способен заменять собой газообразный кислород для клеток крови человека и рыб.

Источник